+7 963 663-02-42
+7 495 792-02-89

info@probiotic-plus.ru

Центральный офис: Москва, Приозёрная, 58.
Филиал: Академика Скрябина, 23
Главная страница Моя страница
Ежедневно, включая выходные и праздники.
10:00 - 22:00
Пробиотики для животных
Корзина 0 руб.
  • Каталог
  • О компании
    • Официальные представительства
  • Статьи
  • Фотогалерея
  • Вопросы и ответы
  • Вакансии
  • Контакты
Главная » Блог » Эффективность применения культур штаммов...

Эффективность применения культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 при получении биогумуса

  • Вид под микроскопом.
26 Апр 2016 / в Блог/

Шайбель А., Шек А.И., Галиакбарова  А.А.

ООО «БЕЛБИО», г. Белгород

ФГБОУ ВПО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина»

Разработка и внедрение в экономику страны новых высокоэффективных средств и методов переработки отходов сельскохозяйственного производства, твердых и жидких отходов различных отраслей промышленности и коммунального хозяйства представляет собой актуальную задачу.

В настоящее время, всестороннее изучение свойств почвенных бактерий Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis выявило у них наличие не только антагонистической активности по отношению к патогенным микроорганизмам, но и ряда других полезных свойств, делающих их перспективными для применения в различных областях экономики страны. Бактерии рода Bacillus широко распространены в природе, являются устойчивыми к литическим и пищеварительным ферментам, длительно сохраняют жизнеспособность в почве, а также в желудочно-кишечном тракте разных видов животных, насекомых, дождевых червей и др.

Среди различных представителей экзогенной микрофлоры, бациллы характеризуются рядом преимуществ. Эти бактерии (кроме B.anthracis и B.cereus) являются безвредными для организма человека и животных даже в высоких концентрациях; обладают антагонистической активностью к широкому спектру патогенных и условно-патогенных микроорганизмов; характеризуются высокой ферментативной активностью; синтезируют более 70 видов биологически активных продуктов метаболизма, способствующих разложению органических веществ, загрязняющих окружающую среду; оказывают антитоксическое и противорадиационное действие;  стабильны при хранении.

Поэтому, создание и внедрение в экономику страны препаратов на основе селекционированных  штаммов Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis является важной проблемой.

Изучение эффективности применения культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 при получении биогумуса проводили в условиях ограниченного производственного опыта.

Культуры штаммов бацилл были предоставлены ООО «Пробиотик-Плюс» (г. Москва) в виде сухой бактериальной массы, в количестве 5 кг. Суммарное количество спор бацилл в 1 г бакмассы составляло не менее 109 КОЕ.

В качестве субстрата для приготовления компоста использовали следующие компоненты:

— опилки смешанных пород древесины;

— торф низовой;

— солома злаковых культур

— сухие листья;

— навоз крупного рогатого скота.

Основные характеристики данных материалов приведены в таблице 1.

 

Таблица 1. Основные характеристики материалов, используемых

для приготовления компоста

 

Наименование материалаВлагоемкость, л/кгрНВлажность, %Содержание, %
золыазота общего
Опилки4,2±0,25,0±0,555±1025,5±0,50,15±0,05
Торф6,0±1,05,5±1,065±526,0±10,02,5±1,0
Солома3,0±1,05,5±0,540±520,0±5,01,8±0,2
Сухие листья3,5±1,54,5±0,535±520,0±10,01,5±0,3
Навоз—7,9±0,567±715,0±1,02,3±0,5

 

Проводили микробиологическое исследование исходных составляющих компоста, путем высева водных суспензий исходных материалов на  МПА — для культивирования бактерий, на среду Чапека – для культивирования актиномицетов и грибов.

Колонии бактерий подсчитывали на третьи и на седьмые сутки (для медленнорастущих форм), актиномицеты — на седьмые и двадцатые сутки, грибы — через пять-семь суток. Подсчитав количество колоний на всех параллельных чашках Петри, определяли среднее количество колоний на чашке и затем делали пересчёт на один грамм исходного компонента.

Учёт спорообразующих микроорганизмов проводили тем же методом, но с предварительным прогреванием водной суспензии компонента в течение 30 минут при 80оС.

Из посевов каждой пробы отбирали и исследовали характерные морфологические типы колоний (табл. 2).

 

Таблица 2. Состав микрофлоры исходных материалов компоста, КОЕ/г

 

Наименование материалаОбщее количество микроорганизмовГрамположительные бактерииГрамотрицательные бактерииАктиномицетыНесовершенные грибыБациллы
Опилки(1,3±0,5)·104———(1,3±0,5)·104—
Торф(5,9±0,9)·106(2,5±0,5)·105103(1,0±0,3)·103(3,0±0,5)·105103
Солома(1,5±0,5)·105105—(1,2±0,1)·103——
Сухие листья(3,2±1,2)·106(1,3±0,3)·104(0,5±0,2)·103(2,0±0,5)·103103102
Навоз(2,0±0,5)·109(0,5±0,1)·108(0,4±0,1)·108——102

 

Наименьшее количество микроорганизмов было обнаружено в опилках, причем только несовершенные грибы. Наиболее богат разными видами бактерий оказался навоз крупного рогатого скота. Бактерии рода Bacillus были выделены в незначительных количествах из торфа, сухих листьев и навоза.

Для компостирования отходы закладывались в пластмассовые лотки.

Площадь поверхности  лотков составляла 1 м2, вместимость – 70 кг компостируемого субстрата, высота лотка – 50 см.

Исходные компоненты смешивали в различных пропорциях с использованием  бакмассы бацилл и навозных дождевых червей Eisenia fetida.

Было подготовлено 6 лотков:

— лоток № 1 – исходные материалы для компостирования и бакмасса бацилл из расчета 0,5 кг на тонну компоста;

— лоток № 2 — исходные материалы для компостирования и бакмасса бацилл из расчета 1,0 кг на тонну компоста;

— лоток № 3 — исходные материалы для компостирования и бакмасса бацилл из расчета 2,0 кг на тонну компоста;

— лоток № 4 — исходные материалы для компостирования, бакмасса бацилл из расчета 1,0 кг на тонну компоста и дождевые черви Eisenia fetida в количестве 250 шт (50 г);

— лоток № 5 — исходные материалы для компостирования и дождевые черви Eisenia fetida в количестве 250 шт (50 г);

— лоток № 6 — исходные материалы для компостирования (контроль).

Бакмассу бацилл вносили в компостируемую смесь в первый день с начала постановки опыта, а навозных дождевых червей Eisenia fetida – через 14 суток с начала постановки опыта.

Общий вес компостируемого субстрата в начале опыта во всех лотках составлял около 50 кг (табл. 3).

 

 

 

 

Таблица 3. Содержание исходных материалов в лотках для компостирования

 

КомпонентыСодержание компонентов в лотках №…, кг
123456
кгкгкгкгкгкг
Опилки101010101010
Торф101010101010
Солома101010101010
Сухие листья101010101010
Навоз101010101010
Бакмасса бацилл0,0250,050,10,05——
Eisenia fetida———0,050,05—

 

Исходные материалы в лотках тщательно перемешивали. В течение экспериментов их влажность поддерживалась в пределах 70-80%.

Полив для поддержания влажности компоста осуществляли с помощью лейки с мелкими отверстиями, предварительно отстоявшейся в течение 3-5 суток водопроводной водой, с температурой плюс 20-24°С.

В начале процесса компостирования и в течение всего периода компостирования периодически определяли влажность и температуру.

Результаты определения влажности в исходном субстрате представлены в таблице 4.

 

Таблица 4. Результаты определения влажности в исходном субстрате для компостирования

 

Влажность исходного субстрата,  %
лоток № 1лоток № 2лоток № 3лоток № 4лоток № 5лоток № 6
74,874,175,078,180,475,2

 

Измерение температуры внутри объема субстрата производили при помощи термометра типа СП-15.

Перед началом опыта, ежедневно в ходе опыта и по его завершении контролировали рН компостов.

В работе применяли общепринятые, апробированные в поисковых исследованиях и описанные в ГОСТ 26712-85 — ГОСТ 26718-85 методы определения физико-химических характеристик материалов, используемых  в процессе исследований, а также субстратов, приготовленных на их основе.

Массовую долю влаги и сухого остатка определяли методом, основанным на потере массы пробы при высушивании исследуемого образца субстрата  в сушильном шкафе, предварительно нагретом до температуры 105-110 0С, до постоянной массы.

Золу в компостируемых составах определяли на основании потери массы пробы исследуемого образца субстрата  после прокаливания при температуре 800оС.

Содержание общего азота определяли по методу Кьельдаля, основанному на минерализации анализируемого образца субстрата при нагревании с концентрированной серной кислотой в присутствии перекиси водорода.

Содержание аммонийного азота определяли также по методу Кьельдаля, основанному на извлечении аммонийного азота из пробы анализируемого образца субстрата раствором соляной кислоты молярной концентрации 0,05 моль/дм3 с последующей отгонкой аммиака в раствор борной кислоты и титровании серной кислотой.

Содержание почвенного гумуса определяли по методу Тюрина, основанному на окислении органического вещества компоста хромовой кислотой до образования углекислоты.

 Содержание гуминовых веществ (Г) в процентах вычисляли по формуле:

 

где а – количество 0,1 н. раствора соли Мора, пошедшее на титрование 10 см3 0,4 н. раствора К2Сг2О7 при холостом анализе, см3;

в – количество 0,1 н. раствора соли Мора, пошедшее на титрование  после окисления гумуса, см3;

(а – в ) – количество 0,1 н. раствора соли Мора, соответствующее количеству хромовой кислоты, израсходованной на окисление гумуса, см3;

К – поправочный коэффициент к титру раствора соли Мора;

0,000517– количество гумуса, соответствующее 1 см3 0,1 н. раствора соли Мора, г;

Р– масса навески, г.

В исследованиях применяли соответствующие аналитические и измерительные приборы отечественного и зарубежного производства.

Опыты проводили в трехкратной повторности. Доверительный интервал среднеарифметических значений рассчитывали с вероятностью 95 % по общепринятым методам.

Результаты исследований.

Анализ динамики изменения температуры субстратов показал, что в них происходит выделение тепла, характерное для процесса компостирования.

Процесс компостирования по этому показателю условно можно разделить на четыре этапа:

I – разогревание;

II – стабилизация;

III – остывание;

IV – созревание.

В начале процесса субстрат во всех лотках находился при температуре окружающей среды, затем температура поднималась благодаря теплоте, образующейся вследствие биологической активности микроорганизмов, присутствующих в субстрате. Продолжительность разогрева составляла 3-12 сут. (рис. 1).

Рис. 1.  Динамика изменения температуры субстратов в процессе компостирования

¨- температура субстратов в лотках № 1, 2, 3, 4, 5;

ÿ — температура субстрата в лотке № 6;

´ — температура субстрата окружающей среды.

 

На втором этапе, за счет изолирующего действия субстрата, выделяющаяся теплота сохраняется. В это время идет наиболее активное разложение легко распадающихся веществ, содержащихся в субстрате, таких как жиры, крахмал, белки. По мере потребления этих веществ активность микроорганизмов замедляется, температура достигает максимума. Затем компост вступает в стадию остывания, где скорость тепловыделения становится очень низкой, и температура падает до температуры окружающей среды (III этап).

Продолжительность протекания процессов компостирования на этапах разогревания, стабилизации и остывания в компостах с добавлением бакмассы бацилл (лотки №№ 1, 2, 3, 4) составила в среднем 27 сут, в вермикомпосте без добавления бакмассы бацилл (лоток № 5) — 36 сут, в контрольном компосте (лоток № 6 — без добавления бакмассы бацилл и дождевых червей) — 87 сут.

На заключительном четвёртом этапе созревание компоста проходило без нагревания.

Динамика изменения рН исследуемых компостов представлена на рисунке 2.

 

Рис. 2. Динамика изменения рН субстратов в процессе  компостирования

¨- рН субстратов в лотках № 1, 2, 3, 4;

ÿ — рН субстрата в лотке № 5;

Ù — рН субстрата в лотке № 6.

 

В начале процесса компостирования рН субстрата был близок к нейтральному и составлял 6,5 — 7,2. В процессе компостирования реакция среды становилась щелочной за счет выделения аммиака при распаде белков. Резкий, характерный для аммиака запах присутствовал в течение первых двух недель, который проявляется при перемешивании компоста. На этапе остывания величина рН падала, но оставалось щелочной. Конечное значение рН компоста во всех лотках было слабощелочное.

Динамика изменений физико-химических показателей компостируемого материала приведена в таблице 4.

 

Таблица 4. Динамика изменений физико-химических показателей компостируемого

материала

 

Продолжительность компостирования, мес.Влаж-ность, %Зола, %Азот

аммоний-ный, %

Азот общий, %Содержание гуминовых веществ, %
Лоток № 1
074,814,20,148,65—
1,575,518,00,17,15,6
275,120,50,056,56,1
3,550,324,50,036,16,9
4,527,924,80,035,97,8
Лоток № 2
074,115,00,177,9—
1,577,220,10,157,46,5
273,525,50,17,07,8
3,548,126,00,056,88,8
4,525,426,50,046,79,0
Лоток № 3
075,016,10,168,5—
1,568,517,90,158,17,3
270,322,30,137,88,5
3,549,125,50,17,59,7
4,530,225,90,097,010,1
Лоток № 4
078,115,20,158,7—
1,572,519,80,18,47,3
271,123,50,048,010,4
3,544,825,90,027,514,6
4,529,527,00,0157,114,8
Лоток № 5
080,415,50,167,7—
1,582,318,80,147,56,2
274,521,60,17,17,5
3,564,225,40,056,58,2
4,535,526,80,026,19,1
Лоток № 6
075,216,20,158,2—
1,572,817,80,147,82,86
270,519,50,127,13,1
3,554,621,40,16,33,62
4,536,123,50,065,13,8

 

Из данных, представленных в таблице 4, следует, что физико-химические показатели компостируемого материала в лотке № 4, где при компостировании использовалась бакмасса бацилл и дождевые черви, превосходили по своим значениям показатели других, как опытных, так и контрольного компостируемых материалов.

Исследуемые физико-химические показатели компостируемого материала в лотках № 1, 2, 3 и 4, где  использовалась бакмасса бацилл,  достигали нормативных результатов через 3,5 месяца с начала процесса компостирования, и через 4,5 месяца оставались практически на одном уровне, в то время, как в компостируемом материале в лотках № 5 и № 6 через 4,5 месяца процессы гумификации продолжались.

Через 4,5 месяца с начала постановки опыта учитывали количество дождевых червей и прирост их числа  (табл. 5).

 

Таблица 5. Изменение численности дождевых червей и их массы

в компостируемых материалах

 

 

Лоток №…

Количество червейПрирост

числа, %

в начале опытав конце опыта
число, шт.масса, гчисло, шт.масса, г
4250501542309616,8
5250501167118466,8

 

Как следует из данных табл. 5, прирост числа дождевых червей в компостируемом материале с внесенной в него бакмассой бацилл из расчета 1 кг сухого вещества препарата на 1  тонну компоста, на 150% выше, чем в компостируемом материале без бацилл.

Полученные данные свидетельствуют о том, что компостируемые материалы с добавлением культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 являются благоприятной средой обитания  для дождевых червей. При этом наблюдается значительное увеличение численности дождевых червей.

В ходе опыта изменения цвета, наличия пятен на поверхности тела дождевых червей, а также отклонений в их поведении не наблюдалось. Реакция на источник внешнего раздражителя у дождевых червей была активной.

Во время экспериментов происходило изменение структуры и цвета исходных компостируемых субстратов. Через 4,5 месяца с начала постановки опыта компост в лотках №№ 1, 2, 3, 4 и 5 представлял собой зернистую, рыхлую массу тёмного цвета.

Компост в лотке № 6 (контроль) был неоднородным, с включениями не гумифицированных компонентов исходных материалов (опилки, солома, листья).

Был проведен химический анализ полученных компостов для сравнения его показателей с нормативными требованиями (табл. 6).

 

Таблица 6. Основные показатели компостов через 4,5 месяца компостирования

 

Наименование

показателя

Нормативное

значение

Лоток №…..
123456
Содержание влаги, %не более 5027,925,430,229,535,536,1
Реакция среды, рНне менее 6,57,27,07,37,27,36,5
Общий азот, %не менее 1,05,96,77,07,16,15,1
Отношение С:Nне более 250,200,220,210,180,290,43
Размер частиц, ммне более 253-43-43-43-43-43-8
Гуминовые вещества, %не менее 4 7,89,010,114,89,13,8

 

Как следует из данных таблицы 6, компост из лотка № 4 по своим основным показателям превосходил  компосты из лотков №№ 1, 2, 3, 5 и 6.

Содержание гумуса в вермикомпосте с использованием бакмассы бацилл было на 5,7%  выше, чем в вермикомпосте без бацилл.

Было отмечено, что процент гуминовых веществ возрастал в компостах при увеличении количества внесенной в них бакмассы бацилл.

В сравнительном аспекте изучали состав микрофлоры опытных образцов вермикомпоста, полученного с использованием бакмассы бацилл (лоток № 4) и без микроорганизмов (лоток № 5).

Для определения общего микробного числа бактерий в вермикомпосте, его водную суспензию высевали на МПА и через сутки подсчитывали количество колоний.

Проводили идентификацию выделенных микроорганизмов по биохимическим тестам.

С целью оценки санитарно-эпидемиологического состояния вермикомпоста проводили исследования на наличие в нем условно-патогенных бактерий.

Для обнаружения санитарно-показательных бактерий пробы вермикомпоста высевали на дифференциально-диагностические среды.

Исследования проводили по методикам, утвержденным Госсанэпиднадзором России, принятым для обследования санитарного состояния почвы и воды.

Одновременно, в качестве контроля, анализировали состав микрофлоры в партии коммерческого биогумуса и садово-огородной земли.

Для проведения микробиологического анализа отбирали 1 г вермикомпоста, растирали в фарфоровой ступке с небольшим количеством физиологического раствора, доводили объем до 100 см3. Водную суспензию встряхивали в течение 20-30 мин. Посев  проводили из разведений от 1:10 до 1:1000000.

Бактерии подсчитывали через 3-5 сут. культивирования, актиномицеты — через 7-20 сут. Подсчитав колонии в трех параллелях, определяли среднее количество на чашке, затем пересчитывали на 1 г воздушно-сухого вермикомпоста.

Данные микробиологического  анализа вермикомпостов представлены в таблице 7.

 

 

 

 

 

 

 

 

Таблица 7.  Микробиологический состав образцов вермикомпостов

и садово-огородной земли

 

 

Исследуемый

образец

Концентрация микроорганизмов, 105 кл/гОбщее микробное число, 106 кл/г
грамполо-жительные бактерииграмотри-цательные бактерииактино-мицетынесовер-шенные грибы
Вермикомпост, лоток № 4103,0±28,0—85±121,0±0,311,0±4,0
Вермикомпост, лоток № 527,0±8,2—39±86,0±1,412,0±4,0
Коммерческий биогумус2,3±0,42,0±0,640,0±5,03,0±0.84,7±0,5
Садово-огородная земля9,0±2,11,2±0,36,0±1,22,0±0,51,8±0,4

 

Грамположительные бактерии в вермикомпосте (лоток № 4 и № 5) были представлены двумя видами бацилл — Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis, являющихся компонентами пробиотической кормовой добавки ОЛИН. В коммерческом биогумусе были обнаружены Bacillus cereus и Bacillus mucoides, в садово-огородной земле — Bacillus subtilis и Bacillus cоagulans.

Грамотрицательная микрофлора и актиномицеты в опытных вермикомпостах не были обнаружены.

В коммерческом биогумусе и в почве были обнаружены гнилостные бактерии родов Pseudomonas и Acinetobacter.

В вермикомпосте, полученном с помощью культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 и дождевых червей, актиномицетов было в 2 раза больше, чем в вермикомпосте, полученном только при участии дождевых червей, и в коммерческом биогумусе и в 14,2 раза больше, чем в садово-огородной земле.

Преобладание в микробном составе актиномицетов характерно для гумифицированных почв.

Данные анализа показывают, что микробиологический состав вермикомпоста, полученного на основе культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 и дождевых червей, соответствует микробиологическому составу плодородных почв с естественным содержанием гумуса.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

 

  1. В процессе компостирования отходов вначале происходит разрушение легко усваиваемых соединений — сахаров, полисахаридов, затем белков и гемицеллюлоз. Разложение сопровождается синтезом комплекса гуминовых соединений. В результате масса органического вещества уменьшается, компост обогащается азотом, гумусом, возрастает его зольность. Меняется структура органических соединений в вермикомпостах: они размельчаются, из них в результате деятельности дождевых червей, образуются зернистые агрегаты.
  2. В начале процесса компостирования рН субстрата был близок к нейтральному и составлял 6,5-7,2 ед. рН. В процессе компостирования реакция среды становилась щелочной за счет выделения аммиака при распаде белков. Характерный для аммиака запах присутствовал в компостах в течение 14 сут. На этапе остывания величина рН падала, но оставалось щелочной. Конечное значение рН компоста во всех лотках было слабощелочное.
  3. Продолжительность протекания процессов компостирования на этапах разогревания, стабилизации и остывания в компостах с добавлением культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 была на 9 сут. короче, чем в вермикомпосте без добавления бакмассы бацилл и на 60 сут. короче, чем в контрольном компосте (без добавления бацилл и дождевых червей), и составила в среднем 27 сут.
  4. При изучении физико-химических показателей компостируемых материалов через 1,5; 2; 3,5 и 4,5 месяцев с начала постановки опыта в вермикомпосте с добавлением культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 содержание золы и гуминовых веществ было выше, чем в других опытных и контрольном компостах во все дни исследований.
  5. Исследуемые физико-химические показатели компостируемых материалов с добавлением бацилл достигали нормативных значений через 3,5 месяца с начала процесса компостирования, и через 4,5 месяца оставались практически на одном уровне, в то время, как в вермикомпосте без добавления культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 и в контрольном компосте через 4,5 месяца процессы гумификации продолжались.
  6. Компостируемые материалы с добавлением бацилл являются благоприятной средой обитания для дождевых червей. Прирост числа дождевых червей в компостируемом материале с внесенным в него бакмассы бацилл из расчета 1 кг на 1 тонну компоста, был на 150% выше, чем в компостируемом материале без бацилл.
  7. Содержание гумуса в вермикомпосте с использованием культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 на 5,7% выше, чем в вермикомпосте без бацилл.
  8. Процент гуминовых веществ в компостах возрастает при увеличении количества внесенной в них бакмассы бацилл.
  9. Микробиологический состав вермикомпоста, полученного на основе культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 и дождевых червей, соответствует микробиологическому составу плодородных почв с естественным содержанием гумуса. В вермикомпосте, полученном с помощью бацилл и дождевых червей, концентрация актиномицетов была в 2 раза выше, чем в вермикомпосте, полученном только при участии дождевых червей. Преобладание в микробном составе компостов актиномицетов характерно для гумифицированных почв.
  10. Применение бакмассы культур штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 из расчета 1 кг на тонну компостируемого материала с использованием дождевых червей сокращает сроки компостирования не менее чем на 1,5 месяца.

 

АРХИВ БЛОГА

  • Июль 2017
  • Июнь 2017
  • Ноябрь 2016
  • Май 2016
  • Апрель 2016
  • Март 2013
  • Декабрь 2012
  • Ноябрь 2012
  • Октябрь 2012
  • Январь 2012
  • Декабрь 2011
  • Ноябрь 2011

ПОПУЛЯРНЫЕ ТОВАРЫ

  • Упаковка пробиотика OLIN для собак Пробиотик OLIN для собак 250 руб.
  • Упаковка пробиотика OLIN для кошек Пробиотик OLIN для кошек 250 руб.
  • Упаковка пробиотика OLIN для домашних грызунов Пробиотик OLIN для домашних грызунов 250 руб.
  • Упаковка пробиотика OLIN для попугаев, канареек, перепелов Пробиотик OLIN для попугаев, канареек, перепелов 250 руб.
  • Упаковка пробиотика OLIN для кроликов Пробиотик OLIN для кроликов 250 руб.
+7 963 663-02-42
+7 495 792-02-89

info@probiotic-plus.ru

Разработка сайта Поддержка сайта
Центральный офис: Москва, Приозёрная, 58
Филиал: Москва, Академика Скрябина, 23

© Copyright - ProBiotic Plus | Пробиотики для животных